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title: "Haemophilus : espèces humaines et animales"
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section: "Bactériologie médicale & vétérinaire"
updated: 2026-11-09
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author: Collectif éditorial de bacteriologie.net
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# Haemophilus : espèces humaines et animales

> Support pédagogique de bactériologie (bacteriologie.net). Ne remplace ni un avis médical ou vétérinaire, ni un protocole de laboratoire validé.
> Source : https://bacteriologie.net/medicale/haemophilus.html · Mise à jour : 2026-11-09

## Synthèse

- Genre *Haemophilus* : bacilles à Gram négatif, exigeants (facteurs X et/ou V), commensaux des voies aériennes supérieures humaines et animales.
- Espèce majeure : *Haemophilus influenzae* (sérotype b historiquement redoutable, prévention par vaccination).
- Pathologies humaines : méningites, épiglottites, pneumonies, otites moyennes aiguës, surinfections bronchiques.
- Pathologies animales : mammites chez les bovins, pneumonies chez les porcs et volailles, septicémies chez les carnivores.
- Diagnostic : culture sur gélose au chocolat enrichie, atmosphère enrichie en CO₂, identification biochimique (dépendance X/V) et MALDI-TOF.
- Résistances naturelles aux aminoglycosides, résistances acquises aux β-lactamines par production de β-lactamases (30-40% des souches).
- Traitement de choix : céphalosporines de 3e génération pour les formes invasives, amoxicilline-acide clavulanique pour les infections communautaires.

## Taxonomie et habitat

Le genre *Haemophilus*, décrit par Pfeiffer en 1892, appartient à la famille des *[Pasteurellaceae](https://bacteriologie.net/medicale/pasteurellaceae.html)*. Sa [taxonomie](https://bacteriologie.net/generale/systematique.html) a évolué avec les techniques moléculaires : 16 espèces sont actuellement validées, dont 8 d'intérêt médical ou vétérinaire. Les reclassements ont été nombreux, comme le transfert de *H. aphrophilus* vers le genre *Aggregatibacter*.

### Espèces cliniquement significatives

Chez l'Homme, *H. influenzae* (capsulé ou non) domine, suivi de *H. parainfluenzae* ([commensal](https://bacteriologie.net/generale/definitions.html) oropharyngé). *H. ducreyi*, agent du chancre mou, présente une niche écologique génitale. En médecine vétérinaire, *H. parasuis* affecte les porcins, *[H. somni](https://bacteriologie.net/medicale/histophilus.html)* les bovins, et *H. paragallinarum* les volailles.

L'habitat naturel est principalement les muqueuses respiratoires (90% de portage nasopharyngé pour *H. influenzae*). La transmission interhumaine se fait par gouttelettes, tandis que les espèces animales contaminent par aérosols ou contact direct. Notons que *H. influenzae* type b (Hib) était avant vaccination la principale cause de méningite bactérienne infantile (incidence divisée par 100 grâce au vaccin conjugué).

## Caractères culturaux et identification

Les *Haemophilus* sont des bactéries fastidieuses nécessitant des [facteurs de croissance](https://bacteriologie.net/generale/nutritioncroissance.html) spécifiques : l'hémine (facteur X) et/ou le NAD (facteur V). Leur culture requiert des milieux enrichis comme la gélose au chocolat (hémolyse à chaud libérant l'hémine), incubés à 35-37°C sous 5% de CO₂ pendant 24-48h.

**Tableau 1 : Identification différentielle des principales espèces de Haemophilus**

| Espèce | Facteurs X/V | Satellitisme | Catalase | Uréase | Hôte |
| --- | --- | --- | --- | --- | --- |
| *H. influenzae* | X + V | Oui | + | - | Humain |
| *H. parainfluenzae* | V | Oui | + | + | Humain |
| *H. ducreyi* | X | Non | - | - | Humain |
| *H. parasuis* | X + V | Oui | + | + | Porcin |

*Test de satellitisme : culture autour d'une strie de *Staphylococcus aureus* (fournit le NAD).*

L'identification repose sur :

- La morphologie (petits bacilles à Gram négatif, parfois coccobacilles)
- Les besoins en facteurs X/V (disques ou bandelettes)
- Le test de satellitisme (croissance autour de *S. aureus*)
- Les caractères biochimiques (galeries API NH, VITEK NH)
- La spectrométrie de masse MALDI-TOF (méthode de référence actuelle)

## Physiopathologie et facteurs de virulence

La pathogénicité des *Haemophilus* repose sur un arsenal de facteurs de virulence :

### Composants structuraux

La capsule polysaccharidique (pour les souches typables a-f) confère une résistance à la phagocytose. Le lipooligosaccharide (LOS) active la cascade du complément et induit une réponse inflammatoire intense. Les protéines de membrane externe (P1-P6) interviennent dans l'adhésion aux cellules épithéliales.

### Facteurs solubles

Les IgA protéases dégradent les immunoglobulines sécrétoires, facilitant la colonisation muqueuse. Certaines souches produisent une cytotoxine vacuolisante (toxine HtxA) et des sidérophores captant le fer. Le biofilm, particulièrement dans les otites chroniques, protège des défenses de l'hôte et des antibiotiques.

> **⚠ Piège diagnostique**
>
> Les souches non typables (sans capsule) de *H. influenzae* sont fréquentes en pathologie respiratoire chronique (BPCO) mais souvent sous-estimées car moins invasives que les souches capsulées.

## Manifestations cliniques humaines et vétérinaires

### Chez l'Homme

*H. influenzae* type b (Hib) cause des infections invasives : méningites (60% des cas pré-vaccination), épiglottites aiguës (obstruction des voies aériennes), arthrites septiques et pneumonies. Les souches non typables provoquent otites moyennes aiguës (20-30% des cas), sinusites, exacerbations de BPCO et conjonctivites. *H. ducreyi* induit des ulcérations génitales douloureuses (chancre mou) avec adénopathies satellites.

### En médecine vétérinaire

*H. parasuis* provoque la maladie de Glässer chez le porc (polysérosites, arthrites, méningites). *H. somni* entraîne des septicémies, des avortements et des encéphalites chez les bovins. *H. paragallinarum* est responsable du coryza infectieux aviaire (écoulements nasaux, sinusite infra-orbitaire). Ces pathologies ont un impact économique majeur en élevage.

Les facteurs de risque communs incluent : âge (enfants <5 ans pour Hib), déficit immunitaire, tabagisme (BPCO), promiscuité (élevages intensifs). La vaccination anti-Hib a drastiquement réduit l'incidence des formes invasives (moins de 1 cas/100 000 enfants en France).

## Diagnostic au laboratoire

Le diagnostic repose sur :

1. **Examen direct** : après coloration de Gram, recherche de petits bacilles à Gram négatif, souvent polymorphes, dans les liquides stériles (LCR, liquide pleural) ou les prélèvements respiratoires.
2. **Culture** : ensemencement sur gélose au chocolat + facteurs X/V, incubation en atmosphère enrichie en CO₂. Les colonies sont translucides, grisâtres, de 1-2 mm après 24-48h.
3. **Identification** : tests biochimiques (catalase, oxydase, uréase), détermination des besoins en X/V, MALDI-TOF (méthode rapide et fiable). Pour *H. influenzae*, la PCR targeting le gène *ompP2* permet de distinguer les souches capsulées.

**Tableau 2 : Antibiogramme type de Haemophilus influenzae (CA-SFM 2024)**

| Antibiotique | Résultat | Commentaire |
| --- | --- | --- |
| Amoxicilline | V | Résistance par β-lactamases (30-40% des souches) |
| Amoxicilline-acide clavulanique | **S** | Traitement de 1ère intention des infections communautaires |
| Céfotaxime | **S** | Traitement des formes invasives (méningites) |
| Ciprofloxacine | **S** | Alternative en cas d'allergie aux β-lactamines |
| Azithromycine | V | Activité inconstante (résistances émergentes) |

*S = Sensible ; R = Résistant ; V = Variable (selon référentiel CA-SFM / EUCAST).*

## Sensibilité aux antibiotiques

Les *Haemophilus* présentent une résistance naturelle aux aminoglycosides (imperméabilité membranaire) et à la colistine. Les résistances acquises concernent principalement :

### Mécanismes de résistance

1) Production de β-lactamases (TEM-1, ROB-1) hydrolysant les pénicillines. 2) Modifications des PLP (diminution d'affinité pour les β-lactamines). 3) Pompes à efflux pour les macrolides. 4) Mutations des gènes codant les topoisomérases (résistance aux fluoroquinolones, encore rare).

### Stratégie thérapeutique

Pour les infections invasives (méningites) : céphalosporines de 3e génération (céfotaxime, ceftriaxone). Pour les infections communautaires : amoxicilline-acide clavulanique ou céphalosporines orales (céfixime). En cas d'allergie : fluoroquinolones (ciprofloxacine) ou azithromycine (selon l'antibiogramme). La durée varie de 7-10 jours (otites) à 14-21 jours (méningites).

> **Note de biosécurité**
>
> Les souches de *H. influenzae* type b doivent être manipulées en niveau de confinement 2 (risque infectieux par aérosols). Les prélèvements suspects (LCR) sont acheminés rapidement au laboratoire (fragilité des bactéries).

## Références

1. Société Française de Microbiologie (SFM). *Rémic : Référentiel en microbiologie médicale*. 7e éd. Paris : SFM ; 2022.
2. Comité de l'antibiogramme de la Société Française de Microbiologie (CA-SFM / EUCAST). *Recommandations 2024-2025 (Humaine et Vétérinaire)*.
3. Denis F, Ploy MC, Martin C, Cattoir V. *Bactériologie médicale : techniques usuelles*. 3e éd. Paris : Elsevier Masson.
4. Prescott LM, Willey JM, Sherwood LM, Woolverton CJ. *Microbiologie*. Bruxelles : De Boeck Supérieur.
5. Blackall PJ, Bojesen AM, Christensen H, Bisgaard M. *Reclassification of [Haemophilus] paragallinarum, [Haemophilus] somnus, [Haemophilus] avium, [Haemophilus] paraphrohaemolyticus and [Haemophilus] parasuis as Avibacterium paragallinarum, Histophilus somni, Avibacterium avium, Avibacterium paraphrohaemolyticus and Glaesserella parasuis, respectively*. Int J Syst Evol Microbiol. 2007.